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Cellular Biology (Sezione 2)

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Cellular Biology

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Anno accademico 2025/2026

Codice attività didattica
BIO0174C
Docenti
Paolo Ettore Porporato (Titolare del corso)
Deborah Chiabrando (Titolare del corso)
Miriam Martini (Titolare del corso)
Corso di studio
[056701] Biotecnologie
Anno
3° anno
Periodo
Primo semestre
Tipologia
Caratterizzante
Crediti/Valenza
6
SSD attività didattica
BIO/13 - biologia applicata
Erogazione
Tradizionale
Lingua
Inglese
Frequenza
Obbligatoria
Tipologia esame
Scritto ed orale
Tipologia unità didattica
modulo
Insegnamento integrato
INTEGRATED LABORATORY TECNIQUES (BIO0174)
Prerequisiti

La comprensione dei contenuti dell'insegnamento richiede di aver acquisito solide basi relativamente a tutti gli insegnamenti previsti per i primi due anni del Corso di Studi.

To understand the contents of the teaching, Students will need to have acquired a solid basis of all the subjects that characterize the first two years of the Course of Studies.

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Sommario insegnamento

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Obiettivi formativi

Lo scopo dell'insegnamento sarà di fornire un'ampia a aggiornata panoramica delle più importanti metodiche sperimentali utilizzate nell'ambito della ricerca biotecnologica di base e applicata. In particolare, il primo modulo (Chimica) fornirà le basi teoriche per la comprensione delle tecnologie spettroscopiche (come ad es. la fluorescenza)  e delle loro applicazioni biologiche;  inoltre questo modulo fornirà nozioni teorico pratiche per lo studio delle proteine mediante modellizzazione per omologia. Il Secondo modulo (Biologia Molecolare) fornirà le nozioni teorico/pratiche necessarie alla comprensione delle tecnologie di sequenziamento di seconda generazione, sia per quanto concerne la gererazione dei dati che la loro gestione e interpretazione bioinformatica. Il terzo modulo (Biologia Cellulare) fornirà le nozioni necessarie alla comprensione delle tecnologie cellulari e biochimiche e microscopiche correntemente utilizzate per lo studio della funzione genica e dei principali processi biologici. Un aspetto fondamentale dell'insegnamento sarà di mettere in evidenza come le diverse tecnologie affrontate possono essere integrate per rispondere a complessi quesiti biologici. A questo scopo verranno analizzati diversi casi di studio tratti dalla letteratura scientifica recente.

The aim of the teaching will be to give a deep and up to date overview of the most recent methodologies used within basic and applied biotechnological research. In particular, the first module (Chemistry) will give the theoretical basis necessary to understand the main spectroscopic techniques (ex. fluorescence) and their biological applications; moreover, this module will offer the theoretical/practical notions necessary to study protein structure through homology modeling. The second module (Molecular Biology) will give the theoretical and practical notions necessary to understand the second generation sequencing technologies, regard to both the generation and the bioinformatic interpretation of the data. The third module (Cellular Biology) will give the notions necessary to understand the cellular, biochemical anb microscopy technologies currently used for the study  of gene function and of the principal biological processes.  A fundamental aspect of the course will be to underscore how the treated technologies can be integrated to address complex biological questions. To this aim, different case-studies will be analyzed from the recent literature.

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Risultati dell'apprendimento attesi

Al termine dell'insegnamento, gli studenti dovranno dimostrare di:

  1. Conoscenza e capacità di comprensione (Knowledge and Understanding)

    • Aver acquisito un’approfondita conoscenza delle basi teoriche su cui si fondano le metodiche sperimentali analizzate durante le lezioni frontali e le esercitazioni.

  2. Capacità di applicare conoscenza e comprensione (Applying Knowledge and Understanding)

    • Saper scegliere in modo appropriato le tecnologie necessarie alla soluzione di specifici quesiti biologici.

  3. Autonomia di giudizio (Making Judgements)

    • Essere in grado di integrare correttamente le diverse metodologie sperimentali per analizzare e interpretare dati biologici complessi.

  4. Abilità comunicative (Communication Skills)

    • Saper comunicare in modo chiaro e rigoroso i concetti e i risultati appresi, utilizzando il linguaggio tecnico appropriato.

  5. Capacità di apprendimento (Learning Skills)

    • Dimostrare un’autonomia nell’approfondire le tematiche trattate e nell’aggiornarsi sulle metodologie emergenti nel campo della biologia cellulare.

 

By the end of the course, students should be able to:

  1. Knowledge and Understanding

    • Demonstrate an in-depth understanding of the theoretical foundations underlying the experimental methodologies analyzed during lectures and practical sessions.

  2. Applying Knowledge and Understanding

    • Select appropriate technologies to address specific biological questions.

  3. Making Judgements

    • Integrate different experimental methodologies to analyze and interpret complex biological data.

  4. Communication Skills

    • Communicate concepts and findings clearly and rigorously, using appropriate technical language.

  5. Learning Skills

    • Demonstrate autonomy in further exploring the topics covered and keeping up to date with emerging methodologies in cellular biology.

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Programma

3. Biologia Cellulare (Prof.ssa Martini, Prof.ssa Chiabrando e Prof. Porporato)

  • Le colture cellulari.
  •  Espressione di proteine d'interesse in batteri e in cellule eucariote: tecniche di trasfezione.
  •  Analisi delle proteine cellulari in vivo (localizzazione e funzione).
  • Saggi funzionali nella biologia cellulare:
    1. Saggi di proliferazione
    2. Saggi di migrazione
    3. Saggi di invasione
    4. Tumorigenesi in vitro e in vivo
  • Studio delle colture di organoidi, confrontando le colture 3D vs 2D per comprendere le loro applicazioni e vantaggi nella modellazione dello sviluppo umano e delle malattie.
  •  Studio delle cellule staminali pluripotenti indotte (iPS).
  1. Tecniche di Riprogrammazione: approfondimento delle metodologie utilizzate per trasformare cellule somatiche in iPS
  2. Applicazioni Cliniche delle iPS: Analisi delle potenzialità terapeutiche delle iPS nella medicina rigenerativa, nelle terapie cellulari e nella modellazione delle malattie
  • Tecniche per l'analisi delle proteine:
    1. Elettroforesi (SDS-PAGE) e Western blotting.
    2. Tecniche cromatografie.
    3. Saggi di immunoprecipitazione.
    4. Saggi di attività chinasica di recettori di membrana e valutazione delle risposte segnalatorie nella cellula.
    5. Analisi di interazione di proteine cellulari in vitro mediante pull down assay.
    6. Analisi di interazione di proteine cellulari in vivo mediante FRET.
  •  Tecniche microscopiche:
  1. Microscopia a fluorescenza.
  2. Microscopia confocale.
  3. Microscopia time-lapse.
  4. Esempi di utilizzo di modelli animali in microscopia dinamica.
  • Valutazione della Funzione Metabolica: approfondimento delle metodologie e delle tecniche utilizzate per analizzare la funzione metabolica delle cellule, studio della glicolisi, il consumo di ossigeno e l'analisi dei flussi metabolici.

 3. Cellular Biology (Prof. Martini, Prof. Chiabrando and Prof. Porporato)

  • Cell cultures.
  • Expression of proteins of interest in bacteria and in eukaryotic cells: transfection technologies.
  • In vivo analysis of cellular proteins (localization and function).
  • Functional assays in cellular biology:
    1. Proliferation assays.
    2. Migration assays.
    3. Invasion assays.
    4. In vitro and in vivo tumorigenicity assays.
  • Investigation of organoid cultures, comparing 3D vs. 2D cultures to understand their applications and advantages in modeling human development and diseases.

 

  • Study of Induced Pluripotent Stem Cells (iPS)
  1. Reprogramming Techniques: In-depth exploration of the methodologies used to transform somatic cells into iPS cells.
  2. Clinical Applications of iPS: Analysis of the therapeutic potentials of iPS cells in regenerative medicine, cellular therapies, and disease modeling.
  •  Protein analysis techniques:
    1. Electrophoresis (SDS-PAGE) and Western blotting.
    2. Chromatographic techniques.
    3. Immunoprecipitation assays.
    4. In vitro kinase assays of membrane receptors and evaluation of cell signaling responses.
    5. In vitro analysis of cellular proteins by pull down assays.
    6. In vivo analysis of cellular proteins by FRET.
  •  Microscopy techniques
  1. Fluorescence microscopy.
  2. Confocal microscopy.
  3. Time-lapse microscopy.
  4. Exemples of the use of animal models in dynamic microscopy.
  • Assessment of Metabolic Function: In-depth exploration of the methodologies and techniques used to analyze the metabolic function of cells, including the study of glycolysis, oxygen consumption, and metabolic flux analysis.

 

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Modalità di insegnamento

I tre quarti delle lezioni verrano svolte in forma frontale.  Un quarto delle lezioni verrà svolta sotto forma di esercitazioni, aventi per oggetto l'esplorazione delle risorse integrative bioinformatiche disponibili in rete ed esercizi mirati alla soluzione di problemi pratici.

Three quarters of the lessons will be given in form of frontal lessons. One quarter of the lessons will consist of practical sessions, aimed at the exploration of the bioinformatic integrative resources available on the web and on problem-solving excercises.

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Modalità di verifica dell'apprendimento

I concetti e le nozioni appresi dallo studente saranno verificati attraverso un’unica prova scritta, articolata in quattro sezioni corrispondenti ai moduli dell’insegnamento. La prova, il cui voto finale sarà espresso in trentesimi, comprende sei domande a risposta aperta sugli argomenti teorici, integrate da quesiti di tipo applicativo.

The concepts and knowledge acquired by the student will be assessed through a single written exam, divided into four sections corresponding to the course modules. The exam, graded on a 30-point scale, consists of six open-ended questions on theoretical topics, complemented by applied problem-solving questions.

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Attività di supporto

Le esercitazioni sulle risorse bioinformatiche verranno svolte al calcolatore nei laboratori informatici del Centro di Biotecnologie Molecolari.

The bioinformatics practical sessions will take place in the computer rooms of the Molecular Biotechnology Centre

Testi consigliati e bibliografia

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Alberts, Biologia Molecolare della cellula, quinta edizione, Zanichelli

Verranno inoltre forniti articoli e review volti ad illustrare alcune delle tecniche trattate e la loro integrazione

 



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Ultimo aggiornamento: 22/09/2025 11:10
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